前面文章我们针对常见样本整理了收集、保存方法，具体请查阅： http://www.liankebio.com/article-information_Tech-319.html 细胞、组织样本怎么做才能继续处理后面的多因子检测呢？ 小科带领大家来针对细胞、组织裂解液如何处理进行专题介绍。

细胞样本裂解方案：
► 贴壁细胞裂解方法

1.    培养1×10⁶-1×10⁷个细胞；

2.   使用胰酶消化收集细胞；

3.   将收集好的细胞转移至15ml圆形离心管，4^oC, 500g离心5min；

4.   小心去除上清，加入5ml预冷PBS重悬细胞，4^oC, 500g离心5min；重复步骤4；

5.   尽可能多的去除上清，小心不要碰到细胞沉淀。

6.   在上步骤获取的细胞中，加入200ul ProcartaPlex Cell Lysis Buffer（EPX-99999-000）。

7.   吹吸混匀8-10次，冰上孵育5min；

8.   将所有细胞转移到1.5ml离心管；

9.   4^oC, 14000g（离心机最大转速）离心10min；

10. 将上清转移到新管中。该上清可立即用于检测或者保存在-80^oC;

11.  按照多因子检测试剂盒操作方法检测。25ul细胞裂解液样本加入25ul Universal Assay Buffer（EPX-11111-000），作为一个样本加入到样本孔中。

► 悬浮细胞裂解方法

1.    培养1×106-1×107个细胞；

2.   将细胞转移到15ml圆形离心管，4^oC, 500g离心5min；

3.   小心去除上清，加入5ml预冷PBS重悬细胞，4^oC, 500g离心5min；

4.   尽可能多的去除上清，小心不要碰到细胞沉淀。

5.   在上步骤获取的细胞中，加入200ul ProcartaPlex Cell Lysis Buffer（EPX-99999-000）。

6.   吹吸混匀8-10次，冰上孵育5min；

7.   将所有细胞转移到1.5ml离心管；

8.   4^oC, 14000g（离心机最大转速）离心10min；

9.   将上清转移到新管中。该上清可立即用于检测或者保存在-80^oC。

10. 按照多因子检测试剂盒操作方法检测。样本孔加入25ul细胞裂解液和25ul Universal Assay Buffer（EPX-11111-000）。

可选步骤：

建议细胞裂解后上清进行蛋白定量检测。我们推荐使用Lowry法蛋白定量检测。建议将所有样本使用预冷的ProcartaPlex Cell Lysis Buffer调整样本蛋白浓度方为4-8 mg/ml。

组织样本裂解方案：

1． 收集组织样本-脾脏、肺、脑、肾脏、肝脏和心脏组织，称重。

2． 按照每100mg组织加入500ul ProcartaPlex Cell Lysis Buffer （EPX-99999-000）。

3． 使用研磨、机械匀浆器、磁珠裂解等方法将组织进行裂解匀浆；

4． 4^oC，16000g 离心10min；

5． 将上清转移到新离心EP管中。

6． 使用蛋白定量试剂盒对上清进行蛋白定量。

7．使用1×PBS把样本进行稀释到10mg/ml；

8． 按照多因子检测试剂盒Protocol进行检测。样本孔加入25ul Universal Assay Buffer（EPX-11111-000）和25ul 稀释后的组织上清液。

当然，如您愿意，可以将您的样本直接寄送给我们，我们帮您做样本处理和多因子检测。

以上信息来源：

1． 细胞裂解方法：点我查看相关PDF

2． 组织裂解方法：点我查看相关PDF