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大鼠转化生长因子-b1(TGF-b1)ELISA试剂盒

原理

本实验采用双抗体夹心 ABC-ELISA法。用抗大鼠 TGF-b1 单抗包被于酶标板上，标准品和样品中的 TGF-b1与单抗结合，加入生物素化的抗大鼠TGF-b1，形成免疫复合物连接在板上，辣根过氧化物酶标记的Streptavidin与生物素结合，加入底物工作液显蓝色，最后加终止液硫酸，在450nm处测OD值，TGF-b1浓度与OD值成正比，可通过绘制标准曲线求出标本中TGF-b1浓度。

试剂盒组成（2-8℃保存）

准备试剂与收集血样

1. 收集标本：血清、血浆（EDTA）、细胞培养上清液、组织匀浆、尿液等尽早检测，2-8℃保存48小时；更长时间须冷冻（-20 ℃或-70 ℃）保存，避免反复冻融。

2. 标准品液配制：使用前加入0.5ml蒸馏水混匀，配成20ng/ml的溶液。设标准管8管，第一管加标本稀释液900ul，第二至第八管加入标本稀释液500ul。在第一管中加入20ng/ml的标准品溶液100ul混匀后用加样器吸出500ul，移至第二管。如此反复作对倍稀释，从第七管中吸出500ul弃去。第八管为空白对照。

3. 10×标本稀释液用蒸馏水作1:10倍稀释（示例：1ml浓稀释液+9ml蒸馏水）。

4. 洗涤液：用重蒸水1:20稀释（示例：1ml浓缩洗涤液加入19ml的重蒸水）

标本激活方法

  1.   将450ul标本稀释液加入到一支1.5ml进口聚丙烯管中,再加10ul血清或血浆标本。

 2.   加20ul 1 N HCI,盖紧，上下混匀。2－8℃放置60± 2分钟。

     3.   加20ul 1 N NaOH,盖紧，上下混匀。

     4.   即用，或放-20/-70℃保存3天。计算结果时乘以稀释倍数50。（注意：不同的标本TGF-β1的水平可能有较大差异，请根据实际情况灵活掌握稀释度）

     5.   细胞培养上清或组织匀浆10倍稀释(410ul的标本稀释液＋50ul样本＋20ul的1N HCI+20ul的1N NaOH)。

6.   尿液直接活化1.4倍稀释（100ul尿液＋20ul的1N HCI+20ul的1N NaOH）

检测程序

1. 加样：每孔各加入标准品或待测样品（已激活）100ul，将反应板充分混匀后置37℃120分钟。

2. 洗板：用洗涤液将反应板充分洗涤4-6次，向滤纸上印干。

3. 每孔中加入第一抗体工作液100ul。将反应板充分混匀后置37℃60分钟。

4. 洗板：同前。

5. 每孔加酶标抗体工作液100ul。将反应板置37℃30分钟。

6. 洗板：同前。

7. 每孔加入底物工作液100ul，置37 ℃暗处反应15分钟。

8. 每孔加入100ul终止液混匀。

9. 30分钟内用酶标仪在450nm处测吸光值。

结果计算与判断

1. 所有OD值都应减除空白值后再行计算。

2. 以标准品2000、1000、500、250、125、62.5、31.2、0 pg/ml为横坐标，OD值为纵坐标，在坐标纸上作图，画出标准曲线。

3. 根据样品OD值在该曲线图上查出相应TGF-b1含量，再乘上稀释倍数即可。

试剂盒性能

  1.   灵敏度：最小的TGF-b1 检测浓度小于15pg/ml。

2. 特异性：可同时检测重组或天然的大鼠TGF-b1。不与大鼠其它细胞因子有交叉反应。

3. 重复性：板内、板见变异系数均小于8.9％。

注意事项

  1.   以上标准孔及待测样品均建议做复孔，每次测定应同时做标准曲线。

 2.   洗涤过程很关键。洗涤不充分将导致精确度误差及OD值错误地升高。

  3.   板条开封后剩余板条要再封好，保持板条干燥。

  4.   本试剂盒宜置4oC冰箱保存。

 5.   本试剂盒仅用于科研，不能用于临床诊断！